Efecto de la luz y la temperatura en la esporulación de cigotosporas de “cochayuyo” Porphyra spp.
DOI:
https://doi.org/10.21704/ac.v81i1.1634Palabras clave:
Porphyra, cochayuyo, cigotosporas, esporulación, cultivo.Resumen
Porphyra spp., conocida en Perú como “cochayuyo”, es un alga roja consumida y comercializada en los mercados locales. Sin embargo, su producción proviene íntegramente de la actividad extractiva por lo cual es necesario desarrollar su cultivo. Así mismo, los principales factores que afectan el proceso de cultivo son la luz (intensidad y fotoperíodo) y la temperatura. Por lo tanto, la presente investigación tuvo como objetivo, determinar las condiciones óptimas de temperatura y luz que promuevan una mayor liberación de cigotosporas. Para ello, individuos reproductivos de Porphyra spp., fueron colectados de playa Santa Elena, Paracas – Pisco y fueron llevados al laboratorio donde fueron estresados bajo dos condiciones de temperatura (T1=18°C y T2=10°C) y luz (E1=sin luz y E2=con luz) y posteriormente, inducidos a liberar cigotosporas en matraces con agua de mar a 18°C con dos condiciones de luz (P1=sin luz y P2=con luz). Así mismo, se evaluó la cantidad de cigotosporas liberadas a las 3, 6, 9 y 12 horas. Los resultaron evidenciaron la liberación de cigotosporas en todos los tratamientos y tiempos evaluados. Sin embargo, la mayor cantidad de cigotosporas se obtuvo en el tratamiento con variación de temperatura para el proceso de estrés (T2 = 10°C) y oscuridad (E1 y P1) a las 12 horas de iniciado el proceso con 151,45 ± 4,57 millones de cigotosporas.
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Referencias
Acleto, C.; Zuñiga, R. 1998. Introducción a las algas. Editorial Escuela Nueva S.A., Pp. 263-271.
Acleto, C. 1986. Algas marinas del Perú de importancia económica. 2da Ed. Publicada. Museo de Historia Natural. Serv. Divul. No 5-1-140.
Acuña, E.; Espinoza, M. 2014. Cultivo experimental de Pyropia sp. Seminario de investigación. Chile. Universidad Católica de la Santísima Concepción.
Agrawal, S.C. 2009. Factors Affecting Spore Germination in Algae — review. Folia Microbiol. 54 (4): 273–302.
Agrawal, S.C. 2012. Factors controlling induction of reproduction in algae--review: the text. Folia Microbiol (Praha). 57(5):387-407.
Amsler, C.D.; Neushul, M. 1989. Diel periodicity of spore release from the kelp Nereocystis luetkeana (Mertens) Postels et Ruprecht. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. Vol. 134: 117-127.
Arbaiza, S. 2016. Viabilidad reproductiva para el cultivo de Chondracanthus chamissoi proveniente de tres poblaciones del litoral peruano. Tesis para optar por el grado de Magister Scientiae en Acuicultura. Escuela de Post-grado. Universidad Nacional Agraria La Molina. Pp: 22.
Ávila, M.; Santelices, B.; McLachlan, J. 1986. Photoperiod and temperature regulation of the life history of Porphyra columbina (Rhodophyta, Bangiales) from central Chile. Can. J. Bot. 64: 1867- 1872.
Ávila, M.; Otaíza, R.; Norambuena, R.; Nuñez, M.; Candia, A. y Poblete, A. 1994. Desarrollo de tecnología de cultivo y repoblamiento de luga negra en la X región. Instituto de Fomento Pesquero. Corporación de Fomento de la Producción. SCI 94/9:97 pp.
Ávila, M.; Piel, M. I.; Cáceres, J.; Alveal, K. 2011. Cultivation of the red alga Chondracanthus chamissoi: sexual reproduction and seeding production in culture under controlled conditions. J Appl Phycol 23:529–536.
Avila-Peltroche, J.; Padilla-Vallejos, J. 2020. The seaweed resources of Peru. Botanica marina 62 (3).
Blouin, N.A.; Brodie, J.A.; Grossman, A.C.; Xu, P.; Brawley, S.H. 2011. Porphyra: a marine crop shaped by stress. Trends Plant Sci, 16(1):29-37.
Brodie, J.; Mortensen, A. M.; Ramirez, M.E.; Rusell, S.; Rinkel, B. 2008. Making the links: towards a global taxonomy for the red algal genus Porphyra (Bangiales, Rhodophyta). Journal of Applied Phycology, 20: 939-949.
Brown, M.T.; Frazer, A.W.J.; Brasch, D.J.; Melton, L.D. 1990. Growth and reproduction of Porphyra columbina Mont. (Bangiales, Rhodophyceae) from southern New Zealand. J. Appl. Phycol. 2, 35–44.
Castañeda, M.; Arbaiza, S.; Diaz, F.; Castillo, Y.; Baltazar, P.; Advíncula, O. 2018. Evaluación del fotoperiodo en el asentamiento de tetraesporas de Chondracanthus chamissoi sobre cuerdas de polipropileno en condiciones semi-controladas de laboratorio. Universidad Nacional Agraria La Molina. Anales Científicos 79(2): 459 – 465.
Chen, J.; Xu, P. 2005. Culture aquatic species information programme – Porphyra spp. En: Departamento de pesca y acuicultura de la FAO (en línea). Roma. Disponible en http://www.fao.org/fishery/culturedspecies/Porphyra_spp/es.
Cian, R.E.; López-Posadas, R; Drago, R.S.; Sánchez de Medina, F.; Martínez-Augustin, O. 2012. A Porphyra columbina hydrolysate upregulates IL-10 production in rat macrophages and lymphocytes through an NF-jB, and p38 and JNK dependent mechanism. Food Chemistry 134 (2012) 1982–1990.
Di Rienzo, J. A.; Macchiavelli, R.E.; Casanoves, F. 2017. Modelos Lineales Mixtos. Modelos Lineales Mixtos Aplicaciones En InfoStat. Primera Edición, 3.
Etcheverry, H.; Collantes, G. 1977. Cultivo artificial del luche, Porphyra columbina (Montagne 1845) (Rhodophyta, Bangiaceae). Rev. Biol. Mar. Dep. Oceanol. Univ. Chile, 16: 195 -202.
Frazer, A.W.J.; Brown, M.T. 1995. Growth of conchocelis phase of Porphyra columbina (Bangiales, Rhodophyta) at different temperatures and levels of light, nitrogen and phosphorus. Phycological Research 43: 249-253.
Friedlander, M.; Dawes, C.J. 1984. Studies on spore release and sporeling growth from carpospores of Gracilaria folifera (Førsskäl) Børgesen var. angustissima (Harvey) Taylor. I. Growth responses. Aquatic Bot. 19: 221–232.
Hamed, I.; Ozogul, F.; Ozogul, Y.; Regenstein, J.M. 2015. Marine Bioactive Compounds and Their Health Benefits: A Review. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety.Vol.14.
Hurd, C.L.; Harrison, P. J.; Bischof, K.; Lobban, C. S. 2014. Seaweed Ecology and Physiology. Second Edition. Cambridge University Press.
Israel. A. 2010. The extreme environments of Porphyra, a fast growing and edible red marine macroalga. In: J. Seckbach and D.J. Chapman (eds.), Red Algae in the Genomic Age, Cellular Origin, Life in Extreme Habitats and Astrobiology 13: 61-75.
Iwasaki, H.; Sasaki, N. 1971. The conchocelis-phase of Porphyra suborbiculata forma latifolia. Proc. Int. Seaweed Symp. 7:364-367.
Kim, Y.S.; Choi, H.G.; Nam, K.W. 2001. Effects of light, desiccation and salinity for the spore Discharge of Gracilaria verrucosa (Rhodophyta) in Korea. J. Fish. Sci. Tech. 4 (4): 257 – 260.
Luo, Q.; Z. Zhu; Zhu, Z.; Yang, R.; Qian, F.; Chen, H.; Yan, X. 2014. Different Responses to Heat Shock Stress Revealed Heteromorphic Adaptation Strategy of Pyropia haitanensis (Bangiales, Rhodophyta). PLoS ONE 9(4): e94354. doi:10.1371/journal.pone.0094354
Macaya, E. 2001. Uso de carpoesporas para el cultivo de Chondracanthus chamissoi (C. Agardh) Kützing 1843 (Rhodophyta; Gigartinales): inducción a la esporulación y fijación sobre diferentes sustratos. Tesis para obtener el título profesional de Biólogo Marino. Universidad Catolica del Norte. Chile. pp 72.
Maggs, C. A.; Callow, M. E. 2003. “Algal spores,” in Encyclopedia of Life Sciences, (London: MacMillan Publishers Ltd.).
Maggs, C.A.; Callow, M.E. 2003. Algal spores. Encyclopedia of LifeSciences, (London: MacMillan Publishers Ltd.).
Michalak, I.; Chojnacka, K. 2015. Algae as production systems of bioactive compounds. Eng. Life Sci. 15:160–176.
Mouritsen, O.G. 2013. Seaweeds: edible, available and sustainable. USA: University of Chicago Press.
Mumford, T.H.; Waaland, R. 1980. Progress and prospects for field cultivation of Iridaea cordata ans Gigartina exasperata. Hopkins Marine Station of Standford University, Pacifics Grove, California. 59 pp.
Noriega, C. 2011. Algas comestibles del Perú. Pan del futuro. Lima: Universidad San Martín de Porres.
Noda, H. 1993. Health benefits and nutritional properties of Nori. Journal of Applied Phycology 5: 255-258.
Oliveira, E.C.; Paula, E.; Plastino, E.M.; Petti, R. 1995. Metodologías para el cultivo no axénico de macroalgas in vitro. In: Alveal K., M.E. Ferrario, E.C. Oliveira, E. Sar. eds. Manual de métodos ficológicos. Chile. Universidad de Concepción. P.: 429 – 447.
Pacheco-Ruíz, I.; Bolaños-Arias, G.; Zertuche-González, J.A.; Gálvez-Télles, A. y Cabello-Pasini, A. 2005. Propagule release and recruitment in Porphyra perforata (Rhodphyta) from Baja California, Mexico. Botanica Marina 48 (2005): 90–95.
Pereira, R.; Sousa-Pinto, I.; Yarish, C. .2004. Field and culture studies of the life history of Porphyra dioica (Bangiales, Rhodophyta) from Portugal. Phycologia 43 (6): 756-767.
Qian, L.; Zhou, Y.; Ma, J.X. 2014. Hypolipidemic effect of the polysaccharides from Porphyra yezoensis. International Journal of Biological Macromolecules 68: 48–49.
Redmond, S.; Green, L.; Yarish, C.; Kim, J.; Neefus, C. 2014. New England Seaweed Culture Handbook: nursery systems. EE. UU. 92 p.
Reed, D.C.; Kinlan, B.P.; Raimondi, P.T.; Washburn, L.; Gaylord, B.; Drake, P.T. 2006. A metapopulation perspective on the Patch Dynamics of Giant Kelp in Southern California. In Kritzer J.P, P.F. Sale. Marine metapopulations. Academic press. 353 - 386 pp.
Romo, H.; Paula, E. 1995. Métodos experimentales para el cultivo de Porphyra. In: Alveal K., M.E. Ferrario, E.C. Oliveira, E. Sar. eds. Manual de métodos ficológicos. Chile. Universidad de Concepción. 551-562 pp.
Santelices, B. 1990. Patterns of reproduction, dispersal and recruitment in seaweeds. Oceanography and Marine Biology An Annual Review 28: 177–276.
Santelices, B. 1990. Patterns of reproduction, dispersal and recruitment in seaweeds. Oceanography and Marine Biology An Annual Review. 28:177–276.
Seguel, M.; Santelices, B. 1988. Cultivo masivo de la fase conchocelis del luche, Porphyra columbina Montagne (Rhodophyta, Bangiaceae). Gayana Bot. 1/4: 317-327.
Shapiro, S.S.; Francia, R.S. 1972. An approximate analysis of variance test for normality. Journal of the American Statistical Association. Journal of the American Statistical Association.
Tala, F.; Chow, F. 2013. Phenology and photosynthetic performance of Porphyra spp. (Bangiophyceae, Rhodophyta): Seasonal and latitudinal variation in Chile. Aquatic Botany 113: 07– 116.
Ugás, R. 2014. 40 verduras viejas y nuevas para diversificar tu alimentación y nutrirte mejor. Universidad Nacional Agraria La Molina.
Umamaheswara, R.; Subbarangaiah, G. 1981. Effects of environmental factors on the diurnal periodicity of tetraspores of some Gigartinales (Rhodophyta). Seaweed Symp, 10: 209–214.
Waaland, J.R.; Dickson, L.G. 1983. Photoperiodic control of conchospore maturation and release in Porphyra abbottae and Porphyra perforata Rhodophyta. J. Phycol. (Suppl.), 19: 6.
West, J.A.; McBride, D. L. 1999. Long-term and diurnal carpospores discharge patterns in the ceramiaceae, Rhodomelaceae and Delesseriaceae (Rhodophyta). Hydrobiología 398/399: 101 – 113.
Yoshida, T.; Notoya, M.; Kikuchi, N.; Miyata, M. 1997. Catalogue of species of Porphyra in the world, with special reference to the type locality and bibliography. Nat. Hist. Res. 3: 518.
Yoshiki, M.; Tsuge, K.; Tsuruta, Y.; Yoshimura, T.; Koganemaru, K.; Sumi, T.; Matsui, T.; Matsumoto, K. 2009. Production of new antioxidant compound from mycosporine-like amino acid, porphyra-334 by heat treatment. Food Chemistry 113: 1127–1132.