INOCULACIÓN DE VAINITA (Phaseolus vulgaris L.) CON DIFERENTES CONCENTRACIONES DE Rhizobium etli Y SU INFLUENCIA SOBRE EL RENDIMIENTO DEL CULTIVO
DOI:
https://doi.org/10.21704/rea.v16i2.1012Palavras-chave:
rizobio, cepa, vaina, inoculante, nódulos y nitrógeno.Resumo
El cultivo de vainita está bastante difundido en la costa sur peruana que tiene características desérticas. Se trabajó a nivel de laboratorio, para producir el inoculante y aplicarlo en campo, mediante un diseño en bloques completamente aleatorizado. Los tratamientos fueron: inoculante 2.5 x 107 cel g-1 suelo, 2.5 x 108 cel g-1 suelo, 2.5 x 109 cel g-1 suelo, control negativo agua destilada, testigo fertilizado y testigo biológico. Se cuantificó el número de nódulos por planta y el porcentaje de nódulos efectivos por planta. En cada cosecha se determinó el rendimiento por hectárea, rendimiento por planta, longitud de vaina, peso de vaina y número de vainas por planta. Se determinó la influencia de la inoculación con diferentes concentraciones de Rhizobium etli sobre el rendimiento de este cultivo. El tratamiento inoculado con una concentración de 2.5 x 109 cel g-1 suelo generó el mayor número de nódulos totales con un promedio de 47.67 y con una efectividad de 84.02%. Este tratamiento produjo una mayor influencia en el rendimiento por hectárea, rendimiento por planta y número de vainas por planta, al mismo tiempo que no tuvo diferencia significativa al ser comparado con el testigo fertilizado.
Downloads
Referências
Albareda M., Rodríguez-Navarro D.N., Camacho M. & Temprano F.J. 2008. Alternatives to peat as a carrier for rhizobia inoculants: Solid and liquid formulations. Soil Biology & Biochemistry. 40(11): 2771-2779.
Aserse A.A., Räsänen L.A., Assefa F., Hailemariam A. & Lindström K. 2012. Phylogeny and genetic diversity of native rhizobia nodulating common bean (Phaseolus vulgaris L.) in Ethiopia. Systematic and Applied Microbiology. 35(2): 120-131.
Barrios F. & Siura S. 1999. Efecto de diferentes concentraciones de biol aplicados foliarmente y al suelo en el cultivo de vainita (Phaseolus vulgaris L.). Páginas 91-103. En: I. Arning, y H. Velásquez (editores) V Congreso Nacional RAAA, Participación Ciudadana para la lnstitucionalidad de la Agricultura Ecológica. 2-6 de octubre del 2001. Lima, Perú. Red de Acción en Alternativas al Uso de Agroquímicos (RAAA), Lima, Perú.
Beebe S., Rengifo J., Gaitan E., Duque M.C. & Tohme J. 2001. Diversity and origin of Andean landraces of common bean. Crop Sci. 41(3): 854–862.
Berton J.J.F., Santos J.C.P., Coehlo C.M.M. & Klauberg F.O. 2008. Effect of inoculation associated to leaf sprayed Co+Mo on the yield and grain nutrients in common bean (Phaseolus vulgaris L). Braz. Arch. Biol. Technol. 51(6): 1089-1096.
Bharti V., Mehta A. & Kumar A. 2015. Advances in the development of microbial biofertilizers as a tool for sustainable agriculture. Páginas 189-208. En: Nova Science Publishers (editores) Microbes in soil and their agricultural prospects. Dr. Harisingh Gour University (Central University), Sagar, MP, India.
CIAT. 1988. Simbiosis leguminosa- rizobio: Manual de métodos de evaluación selección y manejo agronómico. Centro Internacional de Agricultura Tropical, Cali, Colombia.
Chmelíková L., & Hejcman M. 2012. Effect of nitrogen, phosphorus and potassium availability on emergence, nodulation and growth of acidicole Trifolium arvense L. in alkaline soil. Flora - Morphology, Distribution, Functional Ecology of Plants. 207(11): 805-811.
Dardanelli M.S., Fernández de Córdoba F.J., Espuny M.R., Rodríguez Carvajal M.A., Soria Díaz M.E., Gil Serrano A.M., Okon Y. & Megías M. 2008. Effect of Azospirillum brasilense coinoculated with Rhizobium on Phaseolus vulgaris flavonoids and Nod factor production under salt stress. Soil Biology & Biochemistry. 40(11): 2713–2721.
Deaker R., Roughley R.J. & Kennedy I.R. 2004. Legume seed inoculation technology-a review. Soil Biology & Biochemistry. 36(8): 1275-1288.
Divito G.A. & Sadras V.O. 2014. How do phosphorus, potassium and sulphur affect plant growth and biological nitrogen fixation in crop and pasture legumes? A metaanalysis. Field Crops Research. 156(Supplement C): 161-171.
Ferrera-Cerrato R., González-Chávez M.C. & Rodríguez- Mendoza M.N. 1993. Manual de agromicrobiología. Ed. Trillas S. A., México.
Frioni L. 1999. Procesos microbianos. Editorial de la Fundación Nacional de Río Cuarto, Argentina.
Grange L., Hungria M., Graham P.H. & Martínez-Romero E. 2007. New insights into the origins and evolution of rhizobia that nodulate common bean (Phaseolus vulgaris) in Brazil. Soil Biology and Biochemistry. 39(4): 867-876. Grant W.D. & Long P. 1989. Microbiología ambiental. Editorial Acribia S. A. Zaragoza, España.
Hawkesford M., Horst W., Kichey T., Lambers H., Schjoerring J., Skrumsager M.I. & White P. 2012. Part I Nutritional physiology, functions of macronutrients Chapter 6. Página 135 (abstract). En: P. Marschner (editor) Marschner's mineral nutrition of highter plants. Germany.
Herridge D.F., Peoples M.B. & Boddey R.M. 2008. Global inputs of biological nitrogen fixation in agricultural systems. Plant and Soil. 311(1): 1-18.
Howieson J.G., Ballard R.A., Yates R. J. & Charman N. 2011. Selecting improved Lotus nodulating rhizobia to expedite the development of new forage species. Plant and Soil. 348(1): 231-243.
Kass D.C.L. 1998. Fertilidad de suelos. Editorial EUNED, San José, Costa Rica.
Kloepper J.W., Hu C.H., Burkett-Cadena M., Liu K., Xu J. & McInroy J. 2012. Increased populations of deleterious fluorescent pseudomonads colonizing rhizomes of leatherleaf fern (Rumohra adiantiformis) and expression of symptoms of fern distortion syndrome after application of Benlate systemic fungicide. Microorganisms and the Sustainable Management of Soil. 61(Supplement C): 236-246.
Lupwayi N.Z., Olsen P.E., Sande E.S., Keyser H.H., Collins M.M., Singleton P.W. & Rice W.A. 2000. Inoculant quality and its evaluation. Field Crops Research. 65(2):259-270.
