Low-cost tissue culture technology for the orchid regeneration

P.U.  Kumara; HMI  Herath; DLCK  Fonseka; KKIU  Aruna Kumara; AGKKMW  Atapattu; FMMT  Marikar

doi:10.21704/pja.v6i2.1360

Authors

P.U. Kumara General Sir John Kotelawala Defence University, Kandawala Road, Ratmalana, Sri Lanka.
HMI Herath Royal Botanical Garden, Peradeniya, Sri Lanka.
DLCK Fonseka Faculty of Agriculture, University of Ruhuna, Mapalana, Sri Lanka
KKIU Aruna Kumara Faculty of Agriculture, University of Ruhuna, Mapalana, Sri Lanka.
AGKKMW Atapattu General Sir John Kotelawala Defence University, Kandawala Road, Ratmalana, Sri Lanka.
FMMT Marikar General Sir John Kotelawala Defence University, Kandawala Road, Ratmalana, Sri Lanka. https://orcid.org/0000-0003-4579-7263

DOI:

https://doi.org/10.21704/pja.v6i2.1360

Keywords:

Alternative gelling agent, Cattleya seedlings, micropropagation, Orchid subculture

Abstract

Las orquídeas son una de las flores más importantes que se cultivan en Sri Lanka para la exportación y el mercado local. Uno de los principales obstáculos para la expansión del cultivo de orquídeas es el limitado suministro de materiales de plantación de calidad. Las técnicas de micropropagación pueden aplicarse con éxito para la propagación masiva de orquídeas. Pero la micropropagación es costosa, lo que aumenta el coste de producción. Por lo tanto, esta investigación se llevó a cabo para sustituir el costoso agar para el subcultivo in vitro de plántulas de Cattaleya. Las plántulas de Cattaleya de dos meses de edad se subcultivaron en los medios Murashige y Skoog (MS) y Knudson C (KNC) como medios basales. Como agentes gelificantes se utilizaron sagú, sémola, harina de maíz, sémola + agar, harina de maíz + agar. El tratamiento de control se realizó con agar. Los cultivos se mantuvieron en la sala de cultivo. El número de hojas, el número de raíces, la longitud y la anchura de las hojas y el porcentaje de contaminación se registraron a intervalos de cuatro semanas. El sagú y la sémola + agar mostraron un mayor rendimiento y un bajo porcentaje de contaminación como agentes gelificantes alternativos en el medio MS. El sagú, la harina de maíz, el sagú + agar, la sémola + agar y la harina de maíz + agar mostraron mayores rendimientos y bajos porcentajes de contaminación en los medios KNC. Los resultados de este estudio proponen que el sagú, la sémola y la harina de maíz pueden utilizarse como agentes gelificantes alternativos en los medios MS y KNC para las prácticas de subcultivo de orquídeas.

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References

Antonov, A., Stewart, A., & Walter, M. (1997). Inhibition of conidium germination and mycelial growth of Botrytis cinerea by natural products. Biological control. Proceedings of the 50th New Zealand Plant Protection Conference, (pp. 159–164).

Benito, E. P., Arranz, M., & Eslava A. (2000). Factores de patogenicidad de Botrytis cinerea. Revista Iberoamericana de Micología, 17, 43–46.

Campbell, C. L., & Madden, L. V. (1990). Introduction to plant disease epidemiology. New York, Estados Unidos: John Wiley & Sons.

Castro, B., Timmer, L., Leguizamón, J., Müller, G., & Corrales, J. (2000). Enfermedades de los cítricos en Colombia. Bogotá, Colombia: Produmedios.

Colonia, L. (2013). Manejo Integrado de Plagas y Enfermedades en el Cultivo de Cítricos. Agrobanco.

Eyzaguirre, G. (1972). Comparativo de 7 fungicidas para el control de Botrytis cinerea en Cítricos [Thesis, Universidad Nacional Agraria La Molina].

La Torre, B. A., & Rioja, M. E. (2002). Efecto de la temperatura y de la humedad relativa sobre la germinación de conidias de Botrytis cinerea. Ciencia e Investigación Agraria, 29(2), 67–72.

Llanos, A., & Apaza, W. (2018). Antifungal activity of five chemicals and two biological fungicides for the management of Botrytis cinerea, causal agent of Gray Mold in Strawberry. Peruvian Journal of Agronomy, 2(1), 1–8.

Ministerio de Comercio Exterior y Turismo (2018). Reporte Mensual de Comercio. Dirección General de Investigación y Estudios de Comercio Exterior. Boletin.

Mooney, P. (Ed.). (2001). Growing Citrus in New Zealand: A Practical Guide. HortResearch.

Mondino, P. (2002). Manejo de la resistencia a fungicidas. Horticultura, 1, 130–139.

Ortiz, D. (2009). Identificación y control químico del agente causal de la podredumbre de cabezas de alcachofa (Cynara scolymus L.) [Thesis, Universidad Nacional Agraria de la Selva].

Otero, A. (2004). Raleo de frutos en mandarina Satisuma y otros cítricos. Montevideo, Uruguay: Unidad de Agronegocios y Difusión del INIA.

Panebianco, A., Castello, I., Cirvilleri, G., Perrone, G., Epifani, F., Ferrara, M., Polizzi, G., Walters, D., & Vitale, A. (2015). Detection of Botrytis cinerea field isolates with multiple fungicide resistance from table grape in Sicily. Crop Protection, 77, 65–73. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2015.07.010

Pappas, A., & Elena, K. (1992). Effect on gray mould of presence of Botrytis cinerea strains showing reduced sensivity to dicholofluanid. In K. Verhoeff, N. E. Malathrakis, & B. Williamson (Eds.), Recent advances in Botrytis research (pp. 252–256). Wageningen, Países Bajos: Pudoc Scientific Publishers

Restrepo, F. (2010). Evaluación de la eficacia de fungicidas aplicados en espolvoreo para el control de Botrytis cinerea en cultivos de rosas. Bogotá, Colombia: Florverde.

Trimmer, L. W., Garnsey, S. M., & Bradbent, D. (2003). Disease of Citrus. In: R. Ploetz (Ed.), Disease of Tropical Fruit Crops (pp. 163–196). Cambridge, USA: CABI publishing.

Williamson, B., Bettina, T., Tudzynski, P., & Van Kan, J. A. (2007). Botrytis cinerea: The cause of grey mould disease. Molecular Plan Pathology, 8(5), 561–580. https://doi.org/10.1111/j.1364-3703.2007.00417.x

Yu, D., Wang. J., Shao, X., Xu, F., & Wang, H. (2015). Antifungal modes of action of tea tree oil and its two characteristic components against Botrytis cinerea. Journal of Applied Microbiology, 119(5), 1253–1262. https://doi.org/10.1111/jam.12939