ESTANDARIZACIÓN DE UN PROTOCOLO PARA LA CUANTIFICACIÓN DE ÁCIDO ABSCÍSICO MEDIANTE LA TÉCNICA DE ELISA COMPETITIVO
DOI:
https://doi.org/10.21704/rea.v16i1.898Keywords:
Estrés hídrico, acido abscísico (ABA), Ensayo de Inmuno absorbancia Ligado a Enzimas (ELISA), MAC 252, agroecologíaAbstract
La respuesta fisiológica más resaltante de las plantas frente al estrés hídrico por sequía es la síntesis de la fitohormona Acido abscísico (ABA). Una solución a los cambios ambientales es lograr un mejor uso eficiente de agua, por ello la predicción en la magnitud de la señalización de ABA puede tener gran importancia en la agroecología; además, permitirá la optimización de las técnicas de riego en zonas áridas que necesitan de cultivos que limiten el uso de éste recurso natural. Hasta el momento, la metodología más específica y confiable para su cuantificación es el Ensayo de Inmuno-absorbancia Ligado a Enzimas (ELISA por sus siglas en inglés) del tipo competitivo indirecto. Es por esta razón que el presente estudio utilizó esta técnica con la finalidad de establecer un protocolo reproducible y accesible que permita determinar concentraciones de ABA. La metodología consistió en evaluar diferentes concentraciones de los anticuerpos y antígeno, así como del sustrato; siendo las condiciones óptimas que permitieron obtener la mejor sensibilidad y reproducibilidad del protocolo las especificadas a continuación: cobertura con el conjugado ABABSA 300 ng/ml, MAC 252 (anticuerpo monoclonal específico para ABA) a 1:80 000, Antirat IgG a 1:2 000 y sustrato PNPP en 1 mg/ml. Obteniéndose al final ecuaciones lineales cuyos valores de R2 se presentaron en un rango de 0.95-0.99 así como diferencias significativas entre los controles positivos y negativos.
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References
Asch F. 2000. Determination of abscisic acid by indirect enzyme linked immunosorbent assay (ELISA). Technical Report. Taastrup, Denmark: Laboratory for Agrohydrology and Bioclimatology. Department of Agricultural Sciences. The Royal Veterinary and Agricultural University.
Barrios A., Ritchie J. & Smucker A. 1998. El efecto de sequía en el crecimiento, la fotosíntesis y la intercepción de luz en frijol común. Agronomia Mesoamericana. 9 (2): 01- 08.
Cahill D. M. & Ward E. W. 1989. An indirect Enzyme- Linked Immunosorbent assay for measurement of Abscisic Acid in Soybean inoculated with Phytophthora megasperma f. sp. glycinea. Phytopathology. 79: 1238- 1242.
Chaves M.M., Pereira J.S., Maroco J., Rodrigues M.L., Ricardo C.P.P., Osório M.L., Carvalho I., Faria T. & Pinheiro C. 2002. How plants cope with water stress in the field. hotosynthesis and grownth. Annals of Botany 89: 907-916.
Chudasama R. & Thaker V. S. 2007. Relationship between endogenous Abscisic acid and dry matter accumulation in developing seed and pod of Pigeon Pea (Cajanus Cajan). World Journal of Agricultural Sciences 3 (6): 833-842.
Gonzáles J.A. 1999. Eco-fisiologia y morfología del estrés debido a factores adversos. Fisiologia de la resistencia a sequía en quinua (Chenopodium quinoa Willd.). En: Jacobsen S.E. & Mujica A. I Curso Internacional. Proyecto Quinua. Lima, Peru. p: 3-20.
Hartung W., Peuke A. & Davies W. J. 1999. Abscisic Acid—A Hormonal Long-Distance Stress Signal in Plants Under Drought and Salt Stress. Handbook of Plant and Crop Stress, 2 Ed. p: 731–747.
Heidari Y. & Moaveni P. 2009. Study of drought stress on ABA accumulation and Proline among in different genotypes forage corn. Research Journal of Biological Sciences 4 (10):1121-1124.
Jinqing J., Haitang Z., Junwei L., Junmin L. & Ziliang W. 2011. Development and Optimization of an Indirect Competitive ELISA for detection of Norfloxacin Residue in Chicken liver. International Conference on Environmental Science and Technology 6: 460-463.
Jordan W. 2005. Enzyme-Linked Immunosorbent Assay. Medical Biomethods Handbook. p: 419-427.
Kholova J., Hash C.T., Kumar P.L., Yadav R.S., Kocová M. & Vadez V. 2010. Terminal drought-tolerant pearl millet (Pennisetum glaucum L. R. Br.) have high leaf ABA and limit transpiration at high vapour pressure deficit. Journal of Experimental Botany. 61 (5): 1431-1440.
Kholova J. 2011. Protocolo para conjugar el ABA con el BSA (correo electrónico). India. International Crops Research Institude for the Semi-Arid Tropics.
Komy M., Abou-Talbeb E., Aboshosha S. & El-Sherif E.M. 2010. Serological and molecular detection of late blight pathogen and disease development in potato. International Journal of Agriculture and Biology. 12: 161-170.
Leroux B., Maldiney R., Miginiac E., Sossountzov L. & Sotta B. 1985. Comparative quantification of abscisic acid in plant extracts by gas-liquid chromatography and an enzyme-linked immunosorbent assay using the avidinbiotin system. Planta. 166: 524-529.
Lobo Da Costa R. & Lobato A. 2011. ABA-mediated proline synthesis in cowpea leaves exposed to water deficiency and rehydration. Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 35: 309-317.
Mertens R., Deus-Neumann B & Weiler E.W. 1983. Monoclonal antibodies for the detection and quantitation of the endogenous plant growth regulator, abscisic acid.Federation of European Biochemical Societies. 160:1-2.
Ortiz L. & Florez V.J. 2008. Comparacion cuantitativa de ácido abscisico y citoquininas en la tuberización de Solanum tuberosum L. Solanum phureja Juz et Buk. Agronomia Colombiana 26 (1): 32-39.
Quarrie S.A., Whitford P. N., Appleford N. E., Wang T. L., Cook S. K., Henson, I. E. & Loveys B. R. 1988. A monoclonal antibody to (S)-abscisic acid: its characterization and use in a radioimmunoassay for measuring abscísico acid in crude extracts of cereal and lupin leaves. Planta 173: 330-339.
Ross G. S., Elder P., McWha J., Pearce D. & Pharis R. 1987. The development of an Indirect Enzyme Linked Immunoassay for Abscisic acid. Plant Physiology. 85: 46-50.
Sarmard J., Shariati M. & Madadkar M. 2007. Relationship between endogenous Abscisic Acid and B-carotene synthesis in unicellular green alga Dunaliella. American- Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences. 2 (5): 559-564.
Sharp R.E. & Lenoble M.E. 2002. ABA, ethylene and the control of shoot and root growth under water stress. Journal of Experimental Botany 53 (366): 33-37.
Takahashi J. 1987. Evaluación de los métodos serológicos de látex y ELISA para la detección del virus Y de la papa (PVY) y del virus del enrollamiento de la papa (PLRV). Tesis Mag. Sc. Lima, Peru. Universidad Nacional Agraria La Molina
Taylor I.B., Burbidage A. & Thompson A.J. 2000. Control of abscisic acid synthesis. Journal of Experimental Botany. 51: 1563-1574.
Zhang H.T., Jiang J.Q., Wang Z.L., Chang X.Y., Liu X.Y., Wang S.H., Zhao K. & Chen J.S.. 2011. Development of an indirect competitive ELISA for simultaneous detection of enroflaxin and ciproflaxin. Journal of Zheijang University Science B - Biomedicine & Biotechnology. 12 (11): 884-891.