Propagación vegetativa de Retrophyllum rospigliosii (Pilg.) C.N. Page “ulcumano” en cámara de subirrigación en Chanchamayo / Perú
DOI:
https://doi.org/10.21704/rea.v20i1.1687Palabras clave:
propagación, enraizamiento, Retrophyllum rospigliosii, Podocarpaceae, auxina, fisiología.Resumen
El ulcumano (Retrophyllum rospigliosii) es una importante conífera nativa del Perú, que actualmente está desapareciendo de las zonas donde era dominante debido a su excesivo aprovechamiento y problemas en su regeneración. Además, hay limitada información sobre su propagación vegetativa. Es por ello, que el objetivo de la investigación fue determinar la eficiencia de la propagación vegetativa del ulcumano en cámara de subirrigación. Para ello, se usaron cuatro concentraciones de AIB (0, 1 000, 3 000 y 5 000 ppm), dos edades de plantas madre (dos y ocho años) y dos tipos de estacas (apical y media); bajo un diseño factorial completamente al azar. Los resultados indican que, al término de las 17 semanas, el tratamiento T7 (correspondiente a estacas de tipo media, provenientes de plantas madres de dos años y tratadas con 3 000 ppm de AIB) obtuvo el mayor enraizamiento (40%), longitud de raíces (7 mm) y número de raíces por estaca (2.2). La auxina AIB no influyó en el enraizamiento. Los tipos de estacas influyeron en la supervivencia, enraizamiento y brotación. La interacción entre la planta madre y tipo de estaca influyeron de manera significativa en el éxito del enraizamiento; las plantas madres de dos años y estacas tipo medio obtuvieron mayor supervivencia (76.85%), enraizamiento (32.5%) y brotación (70%). Se concluye que es posible propagar el ulcumano usando estacas medias de árboles de dos años.
Descargas
Referencias
Azad M.S., Alam M.J., Mollick A.S. & Khan M.N.I. 2018. Rooting of cuttings of the wild Indian almond tree (Sterculia foetida) enhanced by the application of indole-3-butyric acid (IBA) under leafy and non-leafy conditions. Rhizosphere 5: 8-15. DOI: 10.1016/j.rhisph.2017.11.001.
Balvanera P. 2012. Los servicios ecosistémicos que ofrecen los bosques tropicales. Revista Ecosistemas, 21(1–2): 136-147. https://www.revistaecosistemas.net/index.php/ecosistemas/article/view/33.
Baul T.K., Mezbahuddin M., Hossain M.M. & Mohiuddin M. 2010. Vegetative propagation of Litsea monopetala, a wild tropical medicinal plant: Effects of indole-3-butyric acid (IBA) on stem cuttings. Journal of Forestry Research, 12(4): 228-235. DOI: 10.1007/s11632 010 0409-3.
Castillo J.D., López M.A., López J., Cetina V.M. & Hernández T. 2013. Factores de influencia en el enraizamiento de Abies religiosa (Kunth) Schltdl. et Cham. Revista Chapingo – Serie Ciencias Forestales y del Ambiente, 19(1): 175-184. https://doi.org/10.5154/r.rchscfa.2011.06.038.
Castillo M., Cueva D., Aguirre N. & Günter S. 2007. Propagación vegetativa de dos especies de la familia Podocarpaceae. Bosques Latitud Cero, 3: 3-5. https://www.rncalliance.org/WebRoot/rncalliance/Shops/rncalliance/4C15/95BB/5E58/166A/61A2/C0A8/D218/6FAA/Castillo_et_al_2007_propagacion_podocarpus.pdf.
Cueva N. & Trujillo E. 2016. Biología reproductiva del pino Retrophyllum rospigliosii (Pilg.) C. N. Page. Cueva N. (Ed.). Colegio Integrado Nacional Oriente de Caldas. Pensilvania / Colombia.
Cueva N.C., Vélez D., Barrios A. & Nieto V. 2013. Pino romerón [Retrophyllum rospigliosii (Pilger) C. N. Page], especie nativa potencial para la reforestación en zonas altoandinas de Colombia. Bogotá, Colombia. Corporación Nacional de Investigación y Fomento Forestal (CONIF®), Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural (MADR), Colegio Integrado Nacional Oriente de Caldas (CINOC).
Gardner M. & Thomas P. 2013. Retrophyllum rospigliosii. The IUCN Red List of Threatened Species 2013: e.T34110A2846471. https://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2013-1.RLTS.T34110A2846471.
Hartmann H. & Kester D. 1988. Propagación de plantas. Principios y prácticas. 5ta ed. Editorial Continental. México.
Jannat M., Hossain M.K., Alam M.S., Hossain M.A. & Kamruzzaman M. 2017. Vegetative propagation of Tali (Palaquium polyanthum Engl.) for commercial harvest and landscape conservation. Rhizosphere, 3(1): 9-12. DOI: 10.1016/j.rhisph.2016.11.003.
Leakey R., Mesén J.F., Tchoundjeu Z., Longman K.A., Dick J.M., Matin A., Grace J., Munro R.C. & Muthoka P.N. 1990. Low-Technology Techniques for the Vegetative Propagation of Tropical Trees. Commonwealth Forestry Review, 69(3): 247–257. https://www.jstor.org/stable/43738151.
Leakey R.R.B. 2014. Plant cloning: Macropropagation. In: Encyclopedia of Agriculture and Food Systems, 4: 349 359. https://doi.org/10.1016/B978 0 444 52512 3.00223-0.
Loján L. 2003. El verdor de los Andes Ecuatorianos: realidades y promesas. Proyecto Desarrollo Forestal Participativo en los Andes. Cámara Ecuatoriana del Libro - Núcleo de Pichincha. Ecuador.
Marín A. 1998. Propagación vegetativa de dos podocarpaceas del Bosque andino colombiano con problemas de propagación sexual. Smurfit. Carton, (186): 1–11.
Mesén F. 1998. Enraizamiento de estacas juveniles de especies forestales: uso de propagadores de Sub-irrigación. Manual técnico Nº 30. Costa Rica.
Mill R.R. 2016. A Monographic Revision of Retrophyllum (Podocarpaceae). Edinburgh Journal of Botany, 73(2): 171-261. DOI: 10.1017/S0960428616000081.
Negash L. & van Staden J. 2003. Vegetative propagation of the threatened East African yellowwood (Podocarpus falcatus). South African Journal of Botany, 69(2): 170-175. https://doi.org/10.1016/S0254 6299(15)30342-2.
Ojeda Q.E., Manayay M. & Vergara S.E. 2019. Propagación por estacas de Retrophyllum rospigliosii Pilger y Tabebuia chrysantha (Jacq.) g. Nicholson con diferentes niveles de regulador de crecimiento, Jaén, Cajamarca, 2019. Revista Científica UNTRM - Ciencias Naturales e Ingeniería, 2(2), 33-38. http://dx.doi.org/10.25127/ucni.v2i2.515.
Ragonezi C., Klimaszewska K., Castro M.R., Lima M., de Olivera P. & Zavattieri M.A. 2010. Adventitious rooting of conifers: influence of physical and chemical factors. Trees, 24(6): 975-992. DOI: 10.1007/s00468 010 0488 8.
Rivera-Rodríguez M.O., Vargas-Hernández J.J., López-Upton J., Villegas-Monter Á. & Jiménez-Casas M. 2016. Enraizamiento de estacas de Pinus patula. Revista Fitotecnia Mexicana, 39(4): 385-392. http://www.revistafitotecniamexicana.org/documentos/39-4/5a.pdf.
Ruiz H. & Mesén F. 2010. Efecto del ácido indolbutírico y tipos de estaquilla en el enraizamiento de sacha inchi (Plukenetia volubilis L.). Agronomía Costarricense, 34(2): 259-267. https://doi.org/10.15517/rac.v34i2.3636.
Veierskov B. 1988. Relations between carbohydrates and adventitious root formation. In: Davis T.D., Haissig B.E. & Sankhla N. (Eds.) Adventitious root formation in cuttings. Advances in Plant Sciences Series. Volume 2. 70 78. Dioscorides Press. Portland, USA.
Wendling I., Trueman S.J. & Xavier A. 2014. Maturation and related aspects in clonal forestry-Part I: Concepts, regulation and consequences of phase change. New Forests, 45(4): 449-471. DOI: 10.1007/s11056 014 9421-0.
